Обработка всех инструментов включает в себя последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и непосредственно стерилизации. Вид и объем предстерилизационной обработки определяется степенью инфицированности инструментов, а способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.
а) Предстерилизационная подготовка
Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов.
Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и в группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения СПИДа, правила предстерилизационной подготовки ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающим безусловную гарантию уничтожения вируса иммунодефицита человека. Следует отметить только, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других.
Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняются в перчатках!
Обеззараживание
Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих
средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обеззараживания инструменты промываются проточной водой.
Мытье
Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) раствор, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде.
Высушивание
Высушивание может осуществляться естественным путем. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.
Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.
б) Собственно стерилизация
Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы:
ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ
т
шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки, зоиды, пластинки, винты, стержни и пр.
скальпели, ножницы, хирургические иглы, ампутационные ножи и пр.
катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.
лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.
Рис. 2.7
Основные виды хирургических инструментов
Стерилизация нережущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом.
Стерилизация режущих металлических инструментов
Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хирурга свойств.
Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков.
В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.
Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).
Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов
Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто- клавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что является некоторым недостатком метода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут.
Пластмассовые изделия разового использования, а т^кже катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации.
Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30-40 минут или при
Стерилизация оптических инструментов
Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.
При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноско- пов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс - двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).
Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции является использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!
Стерилизация перевязочного материала и хирургического белья. Стерилизация автоклавированием - очень надежный способ. Стерилизуют в автоклаве в биксах Шиммельбуша. Чаще всего под давлением стерилизуют перевязочный материал и операционное белье, иногда фарфоровую и стеклянную посуду, эмалированные тазики и т.п. Перед автоклавированием материал и белье укладывают (не плотно) в биксы, а если их нет - в холщовые мешки или пакеты. Имеющиеся на боковой стенке бикса отверстия открывают перед загрузкой автоклава и закрывают после стерилизации. Продолжительность стерилизации зависит от показаний маномера: при 1 атм./126,8° - 30 минут; при 2 атм./132,9° - 20 минут.
Стерилизацию текучим паром осуществляют либо в специальном текуче-паровом стерилизаторе Коха, либо используют кастрюлю или ведро с крышкой. В сосуд наливают на 1/3 его высоты воду, вставляют выше уровня воды решетчатую перегородку, на которую помещают стерилизуемые материалы в матерчатых пакетах или биксе. Закрыв сосуд крышкой, в которой для выхода пара должно быть несколько мелких отверстий, включают нагрев. Началом стерилизации считают момент, когда пар начинает выходить из-под крышки непрерывной струей, температура пара достигает 100°. Продолжительность стерилизации не менее 30 минут.
Стерилизация утюжением белья и перевязочного материала допускается только в тех случаях, если нельзя применить другие способы. Обычно температура утюга достигает 150°. Сначала раскладывают и проглаживают простыню, на которой будет идти обработка, затем изгибают водой необходимый материал и проглаживают его с обеих сторон, при этом утюг передвигают медленно по 2-3 раза на одном месте. Проглаженное белье стерильным пинцетом складывают в стерильный бикс или пакет.
Подготовка рук хирурга. Поскольку руки ветеринарного врача постоянно соприкасаются с объектами, загрязненными микроорганизмами, то подготовка рук перед операцией имеет особо большое значение. Обработка рук хирурга состоит из двух этапов:
1. механическая очистка
2. обработка антисептическими и дубящими веществами.
Руки готовят по одному из перечисленных способов:
- способ Оливкова . Руки сначала моют в течение 5 минут горячей водой (40-50°) щеткой и мылом. После этого вытирают насухо грубым полотенцем и обрабатывают в течение 3 минут тампонами, смоченными спиртовым раствором йода 1:3000. Дополнительно подногтевые пространства и ногтевые ложа обрабатывают 5%-м спиртовым раствором йода.
- способ Спасокукоцкого-Кочергина . Руки моют в двух тазиках с 0,5%-м раствором аммиака в течение пяти минут. Затем вытирают полотенцем и обрабатывают 70° спиртом пять минут. Подногтевые пространства обрабатывают 5% раствором йода;
- способ Кияшова основан на использовании 0,5% раствора аммиака, в котором руки моют щётками пять минут и вытирают полотенцем. Завершает подготовку рук обработкой 30% раствором сульфата цинка в течение трёх минут, а подногтевых пространств и ногтевых лож - дополнительно 5% раствором йода.
При кастрации хрячка обработку рук производили по способу Спасокукотского - Кочергина.
Стерилизация хирургических инструментов . Существует холодный и горячий способы стерилизации инструментов. К горячим относят: стерилизацию кипячением в воде, фломбированием и другие; холодным - стерилизацию в тройном растворе Каретникова и другие.
Стерилизация кипячением в воде . Проводят ее в стерилизаторах. Вымытые инструменты, шприцы, иглы и другие кипятят 30 минут в дистиллированной или кипяченой воде.
Для повышения эффекта стерилизации инструменты кипятят в 3% растворе двууглекислой соды или 0,25% растворе едкого натрия 10-15 минут.
Холодный способ стерилизации в тройном растворе Каретникова . Раствор состоит из 20 грамм формолина, 3 грамм фенола и 1 литра дистиллированной воды. Экспозиция 30 минут.
Предварительная стерилизация инструментов . Для экстренных операций необходимо заранее простерилизовать инструменты. Предварительную стерилизацию можно осуществить по способу Андреева. Инструменты складывают в двухслойный полотняный мешок, который туго завязывают и опускают в кипящий 20% раствор углекислой соды на 15 минут. После этого мешок извлекают, подвешивают для стекания раствора и высушивания.
Кипячение инструментов в 20% растворе углекислой соды без последующего их протирания не вызывает коррозии. Инструменты сохраняют стерильность несколько месяцев.
При данной операции наиболее приемлема стерилизация кипячением в воде.
Подготовка поля операции состоит из механической очистки, обезжиривания, обработки антисептиком, изоляцией поля операции .
Механическая очистка включает в себя мытье мылом, удаление волосяного покрова бритьем или выстриганием. Величина поля операции должна быть достаточной для обеспечения стерильных условий.
Готовят поле операции по одному из способов:
- способ Гроссифа-Филончикова . Обезжиренное поле операции «дубят» и асептизируют 5% раствором йода сразу после механической очистки, а затем непосредственно перед разрезом тканей. Интервал между обработками должен быть не менее пяти минут;
-способ Мыша заключается в том, что после бритья, механической очистки и обезжиривания поле операции обрабатывают 10% водным раствором перманганата калия.
При операции поле готовили по способу Гроссифа-Филончикова.
В настоящее время ветеринарные специалисты все чаще пользуются стерильными одноразовыми пластиковыми шприцами и иглами. Однако ветврач должен знать, как при необходимости простерилизоватъ инъекционные шприцы и иглы.
Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов.
К горячим способам относятся: стерилизация кипячением в воде, стерилизация фломбированием и др.
Стерилизация кипячением в воде . Предложена Давидсоном и Кумером в 1881 г. Кипятят инструменты в стерилизаторах. Вымытые инструменты погружают в предварительно прокипяченную в течение (10 мин), для удаления диоксида углерода и кислорода, воду, кипятят 30 мин. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, смазку стирают. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли с тем, чтобы они не затерялись, если инструментов много.
С целью повысить эффект стерилизации инструменты кипятят в 3%-ном растворе бикарбоната натрия (двууглекислой соды) или в 0,25%-ном растворе гидроксида натрия. По окончании стерилизации инструменты тотчас извлекают с решеткой стерилизатора, открывая крышку так, чтобы пар выходил из стерилизатора. При необходимости повторной стерилизации воду не сливают.
Инструменты с решетки стерилизатора раскладывают на инструментальном столике, покрытом сложенной в три слоя стерильной простыней или стерильным полотенцем. Раскладывают инструменты щипцами Микулича или корнцангом. При этом необходимо строго соблюдать определенный порядок - однотипные инструменты на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которую были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты прикрывают стерильной простыней или полотенцем.
Инъекционные иглы и шприцы стерилизуют в отдельном стерилизаторе и только в воде (желательно дистиллированной), поскольку наличие щелочей и других дезинфектантов может привести к инактивации лекарственных средств (например, щелочь инактивирует новокаин). При этом шприцы предварительно тщательно моют проточной водой и помещают в холодную воду в разобранном виде. Смазанные вазелином иглы протирают и промывают эфиром или спиртом. Иглы стерилизуют с мандренами и помещают в стерилизатор через 10 мин после того, как в нем закипит вода.
Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием) . Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и поджигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться. Этот способ дорогостоящий и небезопасный. Кроме того, длительное обжигание отпускает сталь, портит нержавеющие покрытия, тупит режущие части инструментов.
Холодные способы стерилизации имеют большое практическое значение, поскольку позволяют обеспечить стерильность хирургических инструментов даже в полевых условиях, где нет возможности применить надежную тепловую обработку.
К холодным способам относится стерилизация в тройном растворе Каретникова и в растворе Китцлера.
Стерилизация инструментов в тройном растворе Каретникова . Метод предложен в 1938 г. Раствор состоит из 20 г формалина, 15 г соды, 3 г карболовой кислоты и 1 л дистиллированной воды. Продолжительность стерилизации 30 мин. Способ обеспечивает надежную стерилизацию инструментов, не портит их, предохраняет от ржавчины. При продолжительном хранении в банках с притертыми пробками раствор не теряет своих бактерицидных свойств и остается прозрачным.
Аналогичным образом можно стерилизовать инструменты в растворе бактерицида Збарского 1:3000 с содой 1%-ном - 10 мин: в риваноле (этакридина лактат) 1:500 30 мин; в 1%-ном спиртовом растворе бриллиантового зеленого 15 мин. В настоящее время предложен способ стерилизации инструментов с использованием лизафина, лизоформина 3000.
Стерилизация в растворе Китцлера. Шприцы стерилизуют в растворе Китцлера, который состоит: из 3 г карболовой кислоты, 15 г буры и 20 г формалина на 1 л воды. Продолжительность стерилизации 30 мин.
При гнойных операциях инструменты, бывшие в употреблении, вытирают влажной марлей (руками в перчатках), затем стерилизуют в течение 10 мин в 2%-ном растворе карбоната натрия с добавлением 0,5%-ного раствора лизола, вытирают сухим полотенцем и высушивают. При операциях по поводу анаэробных процессов, а также в случае загрязнения инструментов землей их погружают на 10 мин в раствор лизола и после механической очистки стерилизуют в течение 30 мин в 0,25%-ном растворе гидроксида натрия или в 2%-ном растворе карбоната натрия с прибавлением 0,5 % лизола, после чего вытирают обычным порядком.
Инъекционные иглы можно хранить в банках с притертой пробкой в жидкости Никифорова (спирт с эфиром 1:1) или в растворе Китцлера. При этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшиеся на инструментах, можно удалить, протерев их смесью мела с нашатырным спиртом в соотношении 2: 1 или порошком водного оксида железа.
Инструменты необходимо хранить в чистом сухом помещении, инструментальных шкафах, которые должны быть всегда плотно закрыты. Во избежание появления ржавчины на инструментах желательно иметь в шкафах сосуды, наполненные наполовину хлоридом кальция, которые хорошо поглощают влагу из воздуха.
Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода. Редко употребляемые инструменты должны быть смазаны нейтральным жиром - вазелином или натуральной олифой.
Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 мин. Можно применить холодный способ стерилизации в парах формалина. Для этого на дно в соответствующей величины стеклянного сосуда с герметической крышкой наливают немного формалина. Затем подвешивают к крышке или укрепляют на специальной подставке катетеры (бужи, другие резиновые инструменты) и плотно закрывают крышку. Продолжительность стерилизации 24 ч.
Резиновые изделия, бывшие в употреблении, перед каждой стерилизацией механически очищают теплой водой с мылом и мягкими щетками или куском марли. Резиновые катетеры и бужи можно стерилизовать путем кипячения в 40%-ном растворе хлорида натрия в течение 30 мин, или холодным способом в парах формалина, или в течение 3 мин, протирая их салфеткой, смоченной в 0,1%-ном водном или 0,1%-ном спиртовом (спирт 70%-ный или 96%-ный) растворе декаметоксина.
При стерилизации инструменты с оптикой, которую используют для эндоскопии, моют в воде с мылом и протирают салфеткой, смоченной 6%-ным раствором перекиси водорода с 0,5%-ным раствором синтетического моющего средства (М. В. Рубленко, 1996).
Оптические инструменты можно стерилизовать в растворе фурацилина (1:5000) в течение 30…50 мин. Оптическую систему протирают этиловым спиртом или 2,5%-ным раствором гибитана (хлоргексидина биглюконата).
Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter .
Этап 1 - предстерилизационная подготовка
. Ее цель - тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.
Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты тщательно моют про точной водой щетками в отдельной раковине в течение 5 мин (инструменты, загрязненные кровью, моют сразу, не допуская высыхания крови) и затем на 15-20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов, подогретом до 50вС. Шприцы обрабатывают в разобранном виде.
Состав моющих растворов: раствор А - пергидроля 20 г, стирального порошка (типа «Новость», «Прогресс», «Астра» и др.) 5 г, воды 975 мл; раствор Б - 2,5% раствора перекиси водорода 200 мл, стирального порошка «Новость» 5 г, воды 795 мл.
После замачивания инструменты моют в том же растворе ершами, щетками (особенно тщательно обрабатывают замки, зубчики, насечки), затем в течение 5 мин ополаскивают теплой водой и в течение 1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты и шприцы помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 85 °С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.
Инструменты и шприцы, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предварительно помешают в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, ополаскивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по описанной выше методике.
Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией, замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего средства (стиральный порошок), затем моют щеткой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные инструменты. Через 1 сут (время для прорастания спор) их подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стерилизация).
Пункционные, инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца теплой водой, а затем 1 % раствором натрия гидрокарбоната, канал иглы прочищают мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой.
После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а через 8-12 ч - повторно в дистиллированной в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом с помощью шприца либо резиновой груши. Иглы, загрязненные гноем, тщательно моют, просвет их промывают проточной водой; затем помешают на 1 ч в 5% раствор лизола, дополнительно промывая лизолом канал с помощью шприца или резиновой груши, и подвергают такой же дальнейшей обработке, как не загрязненные гноем иглы.
Системы для трансфузии лекарственных веществ или крови требуют тщательной обработки для предупреждения посттрансфузионных реакций и осложнений. В современных условиях используют разовые системы для трансфузии, стерилизованные в заводских условиях. Систему многоразового использования сразу после переливания крови или лекарственного препарата разбирают - разъединяют стеклянные части, капельницу и резиновые трубки, тщательно промывают проточной водой, разминая пальцами резиновую трубку (для лучшего удаления остатков крови). Части системы опускают на 2 ч в подогретый до 60 °С специальный раствор, содержащий 1 % раствор натрия гидрокарбоната и 1% раствор нашатырного спирта. Затем части системы промывают проточной водой и кипятят в дистиллированной воде 30 мин, вновь промывают водой, разминая резиновые трубки, и повторно кипятят 20 мин в дистиллированной воде. После этого систему монтируют и упаковывают для стерилизации.
Этап 2 - укладка и подготовка к стерилизации.
Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помешают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специальной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводских условиях.
Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных типичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для операций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заворачивают в простыню в виде пакета.
Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и заворачивают в кусок хлопчатобумажной ткани в виде пакета, который помещают в стерилизационную коробку (бикс). При массовой стерилизации шприцев в автоклавах (централизованная стерилизация) используют специальную укладку, сшитую из хлопчатобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, радом - иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев. Укладки заворачивают в хлопчатобумажную пеленку в виде пакета и помещают в стерилизатор.
Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладывают марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в от дельный бикс.
Собранные системы для переливания крови проверяют на прочность резиновых трубок, плотность соединения их со стеклянными деталями и соответствие канюль павильонам иглы. Систему сворачивают в виде 2-3 колец, не допуская перегиба резиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем - в вафельное полотенце и укладывают в биксы.
Этап III - стерилизация.
Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 вС), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стерилизаторах (рис. 4). Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в металлических коробках (при снятых крышках) и включают подогрев. При открытой дверце доводят температуру до 80-85 °С и в течение 30 мин просушивают - удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 °С), поддерживая ее автоматичес ки, и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и сниже ния температуры до 70-50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15-20 мин (после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.
При работе с сухожаровым стерилизатором необходимо соблюдать меры безопасности: аппарат должен быть заземлен, по окончании стерилизации следует открывать дверцу шкафа только при снижении температуры до 70-50 °С. Запрещается пользоваться неисправным аппаратом.
Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если упаковки уложены в биксы, то их решетки должны быть открыты. Биксы или другие упаковки укладывают свободно, что бы пар распределялся равномерно.
Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм, что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (температура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.
Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением применяется в небольших лечебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют стационарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стерилизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.
В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды (2% раствор). На дно кипятильника укладывают тонкий простеганный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нем, а не на инструментах.
Инструменты в разобранном виде укладывают на специальные сетки и опускают крючками на дно кипятильника, оставляя ручки крючков снаружи, и закрывают кипятильник крышкой. Время стерилизации - 40 мин с момента закипания воды. По окончании стерилизации сетку с инструментами подхватывают крючками, дают стечь воде и переносят на специальный столик, покрытый стерильной простыней, сложен ной в 4 слоя. Операционная сестра раскладывает инструменты на большом операционном столе.
Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (кипячением в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для спинномозговой пункции и внутривенных вливаний кипятят в дважды дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия.
Инструменты, шприцы и иглы, загрязненные гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.
Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, под лежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением. Их кипятят в течение 1 ч, извлекают из кипятильника и оставляют при комнатной температуре на 12-24 ч (для прорастания спор), а затем повторно стерилизуют кипячением в течение 1 ч (дробная стерилизация).
В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов
ни одним из указанных способов, используют метод обжигания В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надежен, пожаро- и взрывоопасен (наличие кислорода, паров наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожар ной безопасности.
Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными методами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. После предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов. Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия обертывают марлей и кипятят в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия в течение 10 мин, затем помешают в 96% этиловый спирт на 30 мин.
Этап IV - хранение стерильного материала.
Стерильный материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Бели материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут храниться в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.
Стерилизация перчаток.
При любом способе обработки стерильность рук нарушается, особенно при длительных операциях, так как микробы могут выходить из пор, складок, волосяных мешочков, из потовых и сальных желез - «самоинфицирование». Поэтому после обработки по одному из перечисленных выше способов надевают стерильные резиновые перчатки. Перчатки стерилизуют различными способами. Надежную стерилизацию обеспечивает автоклавирование перчаток вместе с перевязочным материалом. Перчатки пересыпают снаружи и внутри тальком, заворачивают по одной в марлевую салфетку и закладывают в бикс для стерилизации. Можно стерилизовать перчатки кипячением в воде в течение 15 мин или погружать в раствор сулемы (1:1000) сроком на 1 ч.
Надетые перчатки протирают спиртом. Нельзя допускать попадания талька с поверхности перчаток в операционную рану, так как это ведет к образованию воспалительных гранулем. При повреждении, перчатки ее следует сразу же заменить, иначе «перчаточный сок» (пот) попадет в рану. После окончания операции перчатки тщательно моют теплой водой с мылом, снаружи и внутри для удаления крови, протирают и сушат. Если перчатки инфицированы гноем (перитонит, флегмона), то после мытья их опускают в дезинфицирующий раствор (лизол, сулема), извлекают, моют горячей водой с мылом, снова опускают в дезинфицирующий раствор на 30 мин, моют и кипятят 20 мин.
Целость перчаток проверяют перед стерилизацией. Обнаруженные отверстия заклеиваются небольшой резиновой заплатой при помощи клея. При стерилизации в автоклаве перчатки быстро приходят в негодность: теряют прочность и эластичность, легко рвутся и поэтому иногда лучше пользоваться холодной обработкой перчаток. Кроме сулемы, для этой цели можно использовать 2% раствор хлорамина, 0,5% спиртовой раствор формалина, йод в растворе спирта и глицерина (йода 2,5 г, спирта и глицерина по 4,0 мл). Для работы в перевязочной можно стерилизовать перчатки в растворе Синицына (борная кислота - 5 г, натрия карбонат - 75 г, формалин - 100 г, фенол - 16,5 г, дистиллированная вода - 5000 г) в течение 3 ч или в 2%-ном растворе хлорамина в течение 30 мин. При тщательной предварительной механической обработке перчаток все эти средства обеспечивают надежную стерилизацию. В исключительных случаях (массовая обработка раненых) - В одних перчатках можно произвести несколько операций (разумеется, если они не связаны с обработкой анаэробных, гнилостных или сильно загрязненных ран). После каждой операции перчатки обрабатывают, не снимая их с рук, марлей, смоченной Долевым раствором, затем моют в тазике руки в перчатках аммиачным раствором (способ Спасокукоцкого - Кочергина), выжирают насухо и обрабатывают спиртом.
41
. Стерилизация оптического инструментария.
Цистоскопы, уретроскопы, цистолитотрипторы и другие оптические инструменты тщательно очищаются сначала в собранном, а затем в разобранном виде. Лампочки из них не выворачивают. Металлические части инструментов кипятят в дистиллированной воде, эластические и оптические стерилизуют в парах формалина. При кипячении металлических частей оптических инструментов следует обращать внимание на то, чтобы они при кипячении не ударялись о дно стерилизатора. Этого легко избежать, если кипячение проводить на специально сделанных стеллажах. Этот стеллаж извлекается после тридцатиминутного кипячения вместе с частями инструмента, которые после высушивания помещаются в пароформалиновый шкафчик и там находятся до их использования.
Оптические части инструмента очищаются, моются в проточной воде с помощью губки и высушиваются на воздухе. После высушивания оптическая часть до окуляра (пластмассовой части) помещается в 95% раствор этилового спирта, где находится в течение часа. При подозрении на мочеполовой туберкулез у исследованного больного оптика вместо спирта на такое же время помещается в 5% раствор фенола.
Оптические инструменты можно стерилизовать и погружением всех частей, кроме ручки со шнуром, в раствор оксицианистой ртути (1:1000) на 20 мин. Оптические трубки погружаются в раствор до воронки окуляра. После цистоскопии больных с подозрением на туберкулез оптические инструменты должны стерилизоваться в растворе оксицианистой ртути не менее 30 мин.
Оптические инструменты можно стерилизовать и в пароформалиновых шкафчиках. Длительность стерилизации не менее 48 ч. После извлечения из камеры их погружают на 10-20 мин в раствор оксицианистой ртути (1:1000) или 95% раствор винного спирта.
Есть еще и вот такое.
Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.
При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс - двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).
42. Стерилизация шелка.
Шелк применяют плетеный и крученый. Плетеный шелк прочнее, но значительно дороже. Толщина нитей определяется номерами (от № 000 до № 16).
Стерилизуют шелк чаще всего по методу Кохера:
1. Мотки шелка моют 2-3 раза в теплой воде с мылом и высушивают стерильным полотенцем.
2. Стерильными руками шелк не туго наматывают на стеклянные катушки или предметные стекла с закругленными краями и опускают на 12-24 часа (в зависимости от толщины) в эфир для обезжиривания.
3. Из банки с эфиром стерильными инструментами мотки шелка переносят на такое же время в 70° спирт.
4. Шелк кипятят в растворе сулемы 1: 1000 в течение 10 минут. Кипячение производят в заранее прокипяченной эмалированной кастрюле.
5. Помыв руки и надев стерильный халат, шелк переносят из раствора сулемы в банку с притертой пробкой, наполненную 96° спиртом, где шелк и хранят до употребления.
Применять готовый шелк можно лишь после посева на стерильность. При отсутствии шелка его заменяют льняными или хлопчатобумажными нитями. Они стерилизуются так же, как и шелк.
Часто применяют модификации способа Кохера.
1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№ 0-4 в течение 15 мин., № 5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.
Стерилизация капрона.
Капрон можно стерилизовать кипячением в течение 20 минут. Стерилизация лавсана. Лавсановые нити могут стерилизоваться автоклавированием, кипячением, а также раствором диоцида (1:1000-1:5000). Большинство видов современного шовного материала стерилизуется в заводских условиях гамма-облучением. Контроль за стерильностью шовного материала осуществляется бактериологическим методом.
Есть такой вариант. Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.
Стерилизация кетгута.
Кетгут представляет собой нити различной толщины, изготовляемые из серозного и мышечного слоя овечьих кишок. В зависимости от толщины кетгут определяют по номерам от № 000 до № 8. В тканях кетгут полностью рассасывается через 2-3 недели. Для удлинения сроков рассасывания в настоящее время применяют хромированный и формалиновый кетгут. В связи с возможностью значительной бактериальной загрязненности кетгута его стерилизация требует особой тщательности. Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала - кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№ 0-1 на 30 сек., № 2-5 на 1 мин., № 6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке - 40 г, в 5-литровой банке - 60 г). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простерилизованным № 0-1 - через 3 суток, № 2-4 - через 4 суток, № 5-6 - через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.
Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г чистого йода и 10 г калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.
Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г йода и 10 г калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г калия йодида и 10 г чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток - в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.
Стерилизация кетгута в спиртовом люголевском растворе.
1. Мотки кетгута погружают в эфир на 12-24 часа.
2. Эфир сливают. Кетгут заливают 2 раза через 8 суток спиртовым люголевским раствором (спирта 96° 1000 мл, йодистого калия 10 г, чистого йода 10 г).
Кетгут подвергают бактериологической проверке, а затем хранят в люголевском растворе.
Стерилизация кетгута в водном люголевском растворе.
1. Мотки сухого кетгута погружают в эфир на 12-24 часа.
2. Эфир сливают и кетгут заливают 2 раза через 8 суток водным люголевским раствором (дистиллированной воды 1000 мл, йодистого калия 20 г, чистого йода 10 г).
3. Кетгут заливают 96° спиртом на 4-6 суток. Берут посев на стерильность.
4. Хранят готовый кетгут в 96° спирте.
Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов. К горячим относятся: стерилизация кипячением в воде, фламбирование и др. К холодным способам относится стерилизация в тройном растворе Каретникова.
Стерилизация кипячением в воде. Предложен Давидсоном и Кумером в 1881 году. Проводится в стерилизаторах. Вымытые инструменты погружаются в предварительно прокипяченую (10 минут) воду для удаления углекислоты и кислорода и кипятят 30 минут. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, то его вытирают. Смазанные вазелином иглы протирают и промывают эфиром или спиртом. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли с тем, чтобы они не затерялись, если инструментов много.
С целью повышения эффекта стерилизации инструменты кипятят в 3% растворе двууглекислой соды, или в 0,25% растворе едкого натра. По окончании стерилизации инструменты тотчас извлекают с решеткой стерилизатора, открывая крышку так, чтобы пар выходил из стерилизатора, не обжигая при этом руки и лицо. При необходимости повторной стерилизации воду не сливают.
Инструменты с решетки стерилизатора раскладывают на инструментальном столике, покрытым в три ряда стерильной простыней или полотенцем. Раскладку инструментов лучше проводить щипцами Микулича или корнцангом. При этом строго соблюдается определенный порядок -- однотипные инструменты на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которой были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты покрывают стерильной простыней или полотенцем.
Инъекционные иглы и шприцы стерилизуют в отдельном стерилизаторе и только в воде, поскольку наличие щелочей и др. (желательно дистиллированной) дезинфектантов может привести к инактивации лекарственных средств (например, щелочь инактивирует новокаин). При этом иглы и шприцы предварительно тщательно моют проточной водой и помещают в холодную воду в разобранном виде. Иглы стерилизуют с мандренами и помещают в стерилизатор через 10 минут после того, как в нем закипит вода.
Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием), Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и зажигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться.
Этот способ дорогой и небезопасный. Кроме того, длительное обжигание отпускает сталь, портит нержавеющие покрытия, тупит режущие части инструментов. Поэтому фламбирование используется лишь при оказании экстренной хирургической помощи, а также для стерилизации эмалированной посуды, когда за недостатком времени невозможны другие способы стерилизации.
Холодные способы стерилизации имеют большое практическое значение, поскольку позволяют обеспечить стерильность хирургических инструментов даже в полевых условиях, где нет возможности применить надежную тепловую обработку.
Стерилизация инструментов в тройном растворе Каретникова. Метод предложен в 1938 году. Раствор состоит из 20 г формалина, 15 г соды, 3 г карболовой кислоты и 1 литра дистиллированной воды. Продолжительность стерилизации 30 минут. Способ обеспечивает надежную стерилизацию инструментов, не портит их, предохраняет от ржавчины. При продолжительном хранении в банках с притертыми пробками раствор не теряет своих бактерицидных свойств и остается прозрачным.
Аналогичным образом можно стерилизовать инструменты в растворе бактерицида 1:3000 с содой 1% - 10 минут: в риваноле (этакридина лактат) 1:500 - 30 минут; в 1% спиртовом растворе бриллиантовой зелени - 15 минут.
Шприцы стерилизуют в растворе Китцлера, который состоит из: 3 г карболовой кислоты, 15 г буры и 20 г формалина на 1 литр воды. Продолжительность стерилизации -- 30 минут.
При гнойных операциях инструменты, бывшие в употреблении, вытирают влажной марлей (руками в перчатках), затем стерилизуют в течение 10 минут в 2% растворе углекислого натрия с добавлением 0,5% раствора лизола, вытирают сухим полотенцем и высушивают. При операциях, связанных с анаэробными процессами, а также в случае загрязнения инструментов землей их погружают на 10 минут в раствор лизола и после механической очистки стерилизуют в течение 30 минут в 0,25% растворе едкого натрия или в 2% растворе углекислой соды с прибавлением 0,5% лизола, после чего вытирают обычным порядком.
Хранение инструментов. Инъекционные иглы можно хранить в банках с притертой пробкой в жидкости Никифорова (спирт с эфиром поровну) или в растворе Китцлера. При этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшуюся на инструментах можно удалить с помощью мела с нашатырным спиртом в отношении 2:1 пли порошком водной окиси железа.
Инструменты необходимо хранить в чистом сухом помещении, инструментальных шкафах, всегда плотно закрытых. Во избежание появления ржавчины на инструментах желательно иметь в шкафах сосуды, наполненные наполовину хлористым кальцием, которые хорошо поглощают влагу из воздуха.
Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода. Редко употребляемые инструменты должны быть смазаны нейтральным жиром -- вазелином или натуральной олифой.
Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина. Берут соответствующей величины стеклянный сосуд с герметической крышкой. На дно сосуда наливают немного формалина. Затем подвешивают к крышке пли укрепляют на специальной подставке катетеры (бужи, другие резиновые инструменты) и плотно закрывают крышку. Продолжительность стерилизации -- 24 часа. Резиновые изделия, бывшие в употреблении, механически очищают перед каждой стерилизацией теплой водой с мылом и мягкими щетками или куском марли.
Резиновые катетеры и бужи можно стерилизовать путем кипячения в 40% растворе хлористого натрия в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина, или в 0,1% водном или 0,1% спиртовом (спирт 70° или 96°) растворе декаметоксина (протирают салфеткой в течение 3 минут).
Стерилизация инструментов с оптикой, которую используют для эндоскопии, моют в воде с мылом и протирают салфеткой, смоченной 6% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором синтетического моющего средства (Рубленко М.В.. 1996).
Оптические инструменты можно стерилизовать в растворе фурацилина (1:5000) в течение 30-50 минут. Оптическая система протирается этиловым спиртом или 2,5% раствором гибитана (хлоргексидина биглкжоната).
При стерилизации инфузионных систем, шприцев-автоматов, что имеют в своем составе полимерные материалы, следует обращать особое внимание на узлы и элементы, которые вступают в непосредственный контакт с лечебным веществом. Предварительно эти места моют 3% раствором перекиси водорода с 0,5-1% раствором синтетического моющего средства или смесью равных частей 1% раствора натрия гидрокарбоната и I % раствора аммиака. Дальнейшая обработка предполагает погружение инструментов в раствор одного из нижеперечисленных антисептиков: 0,5-2,5% гибитана (хлогексидина биглюконата) (20-30 минут), 0,1% диоцида (30 минут), 6% перекиси водорода (6 часов), 4,8% первомура (15 минут), или 70° этилового спирта (2 часа). Все антисептические средства, кроме перекиси водорода после стерилизации смывают стерильной водой.
